Ćwiczenia z metod fizycznych w biologii (16.11.11) Sprawozdanie nr. 1 – Spektrofotometria Sprawozdanie wykonane przez: Sandra Junik Paulina Karpet...
53 downloads
35 Views
1MB Size
Ćwiczenia z metod fizycznych w biologii (16.11.11)
Sprawozdanie nr. 1 – Spektrofotometria
Sprawozdanie wykonane przez:
Sandra Junik Paulina Karpeta Nikodem Kubicz Ariel Makarowicz Kamil Senderowski
Kierunek – Biotechnologia Rok akademicki – 2011/12 Semestr – I Potok – II Grupa Ćwiczeniowa – 3A
Spis Treści: str. 3-7 str. 3 str. 4
-
str. 6
-
str. 8-14 str. 9
-
str. 10
-
str. 11
-
str. 12
-
str. 13
-
str. 15-20 str. 16
-
str. 17
-
str. 18
-
str. 19
-
str. 19
-
str. 21
-
Zadanie nr. 1 - Ćwiczenie nr. 10.4.1. Tabela 1.1: Skład ilościowy badanych próbek Tabela 1.2: Końcowe stężenia DCIP na podstawie absorpcji przy fali długości 600 nm Wykres 1.1: Zależność absorpcji przy λ=600 nm od wartości stężenia DCIP [μM] Zadanie nr. 2 - Ćwiczenie nr. 10.4.2.2 - Wpływ pH na parametry spektralne związków Tabela 2.1: Skład chemiczny i ilościowy oraz pH badanych próbek Tabela 2.2: Wartość absorpcji próbek przy długościach fali świetlnych od 300 do 800 nm Wykres 2.1: Wpływ pH na parametry spektralne związków chemicznych Tabela 2.3: Wartość absorpcji próbek dla fali świetlnej o długości 565 nm Wykres 2.2: Krzywa zależności absorpcji czerwieni fenolowej dla długości fali 565 nm od pH Zadanie nr. 2 - Ćwiczenie nr. 10.4.3 – Spektrofotometryczna analiza jakościowa Tabela 3.1: Wartość absorpcji próbek przy długościach fali świetlnych od 300 do 800 nm Wykres 3.1: Zależność wartości absorpcji próbek od długości fali świetlnej Tabela 3.2: Zależność absorpcji Próbki X od długości fali świetlnej Wykres 3.2: Zależność wartości absorpcji Próbki X od długości fali świetlnej Wykres 3.3: Zależność wartości absorpcji Próbki X oraz jej składowych od długości fali świetlnej Zadanie nr. 4 – Zadanie dodatkowe
Zadanie nr. 1 - Ćwiczenie nr. 10.4.1. - Wyznaczanie stężenia roztworu na podstawie prawa Lamberta - Beera A. Cel doświadczenia: Zapoznanie z praktycznym wykorzystaniem prawa Lamberta – Beera do wyznaczania stężenia substancji w roztworze. Doświadczenie ma również na celu zapoznanie z reprezentacją graficzną widma w funkcji stężenia.
B. Materiały i odczynniki użyte w doświadczeniu:
10 probówek szklanych
kuweta spektrofotometryczna plastikowa długości 1cm
spektrofotometr
pipeta automatyczna o zakresie 1-5 ml
woda destylowana
50 ml 100μM roztworu DCIP
C. Przebieg doświadczenia: 1) Do wykonania ćwiczenia konieczne było przygotowanie po 10 ml roztworów DCIP (dichlorofenyloindofenolu) o różnych stężeniach z roztworu pierwotnego o stężeniu 100 μM. Roztwory sporządziłem zgodnie z poniższą tabelą: Tabela 1.1: Skład ilościowy badanych próbek Nr probówki
Objętość 100 μM DCIP [ml]
H2O [ml]
1
1
9
2
2
8
3
3
7
4
4
6
5
5
5
6
6
4
7
7
3
8
8
2
9
9
1
10
10
0
2) Po sporządzeniu wyżej wymienionych roztworów przystąpiłem do pomiarów na spektrofotometrze. Zanim jednak to uczyniłem wyzerowałem urządzenie pomiarowe. W tym celu do kuwety spektrofotometrycznej nalałem 2/3 objętości
wody
destylowanej,
która
była
moim
rozpuszczalnikiem,
i
skalibrowałem urządzenie, tzn. ustawiłem wartość absorpcji przy długości fali 600nm na 0.
3) Kolejno wykonałem trzy serie powtórzeń, zaczynając pomiary od roztworu o najmniejszym stężeniu. Uzyskane wyniki przedstawia tabela poniżej. Tabela 1.2: Końcowe stężenia DCIP na podstawie absorpcji przy fali długości 600nm
A600
Końcowe
Odchylenie
teoretyczne stężenie
standardowe
DCIP [μM]
Końcowe stężenie DCIP wyznaczone na podstawie A600 [μM]
A1
A2
A3
Aśrednie
10
-0,004
-0,009
0,001
0,001
0,005
0,062111801
20
0,006
0,004
0,003
0,004
0,001527525
0,248447205
30
0,017
0,010
0,015
0,014
0,003605551
0,869565217
40
0,023
0,023
0,027
0,024
0,002309401
1,49068323
50
0,039
0,034
0,032
0,035
0,003605551
2,173913043
60
0,034
0,042
0,034
0,036
0,004618802
2,236024845
70
0,043
0,046
0,049
0,046
0,003
2,857142857
80
0,051
0,057
0,053
0,054
0,00305505
3,354037267
90
0,066
0,068
0,072
0,068
0,00305505
4,223602484
100
0,071
0,073
0,080
0,075
0,004725816
4,658385093
*Wyjaśnienie dotyczące wyników otrzymanych w tabeli.
a) Obliczanie stężenia teoretycznego:
10-4 mola DCIP – 1000 ml x
- 1 ml
x= 1,0 * 10-7 mola C1=
1,0 * 10 7 mola =1,0 *10-5 M = 10μM 0,01l
b) Obliczanie stężenia końcowego na podstawie absorpcji przy fali długości
600nm: Obliczenia wykonujemy zgodnie z prawem Lamberta- Beera. Molowy współczynnik absorpcji dla DCIP przy λ=600 nm wynosi ε=16100 dm3/mol*cm A= C* ε* l C – stężenie molowe l – długości drogi optycznej (grubość kuwety) ε=16100 dm3/mol*cm Przekształcając wzór na prawo Lamberta- Beera otrzymałem: C=
A *l
Zgodnie z tym wzorem obliczałem kolejne stężenia. C=
A *l
C1=
0,001 6,21*10-8 M=6,21 * 10-2μM 16100 * 1
c) Odchylenie standardowe zostało policzone ze wzoru: 2 n s x2 x n 1
Gdzie: n – liczba wyników w próbie x – średnia arytmetyczna z próby
x 2 - średnia arytmetyczna kwadratów wartości z próby
4) Wyniki
przedstawione
w
tabeli
sporządziłem
w
formie
wykresu
przedstawiającego zależność stężenia DCIP od absorpcji średniej przy długości fali równej 600nm.
Wykres 1.1:
Absorpcja promieniowania
Zależność absorpcji przy λ=600nm od wartości stężenia DCIP [μM] 0,09 0,08 0,07 0,06 0,05 0,04 0,03 0,02 0,01 0 -0,01 0
y = 0,0161x + 2E-17 2 R =1
1
2
3
4
5
C roztowu [μM]
D. Wnioski:
Wyniki teoretyczne znacznie różnią się od wyników pomiarowych. Stężenia roztworów
teoretycznych
są
blisko
21,5
razy
większe
niż
stężenia
przygotowanych roztworów pomiarowych. Tak duża różnica wynika z błędu jaki został popełniony podczas przygotowywania roztworu wyjściowego 100 μM. Przyjąłem do obliczeń stężenie roztworu wyjściowego jako 100 μM, podczas gdy jego faktyczne stężenie teoretyczne było blisko 20 razy mniejsze, dlatego otrzymałem tak wielką różnicę porównując stężenia teoretyczne z stężeniami prób przygotowanych przez pipetowanie odpowiednich objętości. Doświadczenie miało na celu pokazanie jak można doświadczalnie obliczyć nieznane stężenie roztworu przy pomocy pomiarów spektrofotometrycznych. Na
podstawie wykresu i wyznaczonego równania możemy wyliczyć dowolne stężenie roztworu. Wykres przedstawiający tę zależność powinien rosnąć liniowo. Tak też się dzieje w przypadku wykresu, który otrzymałem na podstawie moich pomiarów. Różnice w wynikach pomiarów dla kolejnych trzech serii wynikają z dokładności spektrofotometru. Jako, że za każdym razem nie przepłukiwałem kuwety spektrofotometrycznej rozpuszczalnikiem stężenie mogło się minimalnie zmieniać w kolejnych pomiarach, ponieważ spektrofotometr jest bardzo czuły nawet na najmniejsze zmiany stężenia. Wyznaczenie współczynnika korelacji liniowej (R2) umożliwia nam określenie poziomu zależności liniowej od zmiennych losowych. Im kwadrat odległości punktów pomiarowych od linii trendu jest mniejszy, tym bardziej punkty te układają się na linii prostej. W związku z tym wartość współczynnika korelacji R2 jest
bliższa
jedności.
W
doświadczeniu,
które
wykonałem
wyznaczony
współczynnik korelacji wynosi dokładnie 1, co oznacza, że pomiary zostały wykonane precyzyjnie a zależność absorpcji od stężenia na wykresie układa się idealnie liniowo.
Zadanie nr. 2 - Ćwiczenie nr. 10.4.2.2 - Wpływ pH na parametry spektralne związków A. Cel doświadczenia: Zbadanie i przedstawienie jak pH związku chemicznego w roztworze rozpuszczalnika wpływa na jego właściwości spektralne, szczególnie w przypadku wskaźników kwasowo-zasadowych jak czerwień fenolowa.
B. Materiały i odczynniki użyte w doświadczeniu:
8 probówek szklanych kuweta spektrofotometryczna plastikowa o długości 1cm spektrofotometr 2 pipety automatyczne – o zakresie 100-1000 μl oraz od 1-5 ml woda destylowana 0.1% (w/w) czerwieni fenolowej 0.2 M roztwór CH3COOH 0.2 M roztwór CH3COONa 0.1 M roztwór KOH 0.1 M roztwór HCl 50 mM roztwór Na2B4O7 66 mM roztwór KH2PO4 66 mM roztwór Na2HPO4
C. Przebieg doświadczenia: 1) Do doświadczenia wykorzystaliśmy wcześniej przygotowany roztwór czerwieni fenolowej o stężeniu 0.1% (w/w). 2) Przygotowaliśmy 8 próbek badawczych według poniższych instrukcji:
Próbka 1: Do 3 ml 50 mM roztworu Na2B4O7 dodaliśmy 2 ml 0.1 M roztworu KOH i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej Próbka 2: Do 4.25 ml 50 mM roztworu Na2B4O7 dodaliśmy 0.75 ml 0.1 M roztworu HCl i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej Próbka 3: Do 2.75 ml 50 mM roztworu Na2B4O7 dodaliśmy 2.25 ml 0.1 M roztworu HCl i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej Próbka 4: Do 2 ml 66 mM roztworu KH2PO4 dodaliśmy 3 ml 66 mM roztworu Na2HPO4 i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej Próbka 5: Do 2.5 ml 66 mM roztworu KH2PO4 dodaliśmy 2.5 ml 66 mM roztworu Na2HPO4 i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej Próbka 6: Do 3.5 ml 66 mM roztworu KH2PO4 dodaliśmy 1.5 ml 66 mM roztworu Na2HPO4 i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej Próbka 7: Do 4.5 ml 66 mM roztworu KH2PO4 dodaliśmy 0.5 ml 66 mM roztworu Na2HPO4 i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej
Próbka 8: Do 1.5 ml 0.2 M roztworu CH3COOH dodaliśmy 3.5 ml 0.2 M roztworu CH3COONa i 150 μl roztworu czerwieni fenolowej
Tabela 2.1: Skład chemiczny i ilościowy oraz pH badanych próbek Nr probówki
Odczynnik A
Ilość A [ml]
Odczynnik B
Ilość B [ml]
Czerwień fenolowa [ml]
pH
50 mM Na2B4O7 50 mM Na2B4O7 50 mM Na2B4O7
3
0.1 M KOH
2
150 μl
9.97
4.25
0.1 M HCl
0.75
150 μl
9.01
2.75
0.1 M HCl
2.25
150 μl
7.94
4
66 mM KH2PO4
2
3
150 μl
6.98
5
66 mM KH2PO4
2.5
2.5
150 μl
6.81
6
66 mM KH2PO4
3.5
1.5
150 μl
6.47
7
66 mM KH2PO4
4.5
0.5
150 μl
5.91
8
0.2 M CH3COOH
1.5
3.5
150 μl
5.00
1 2 3
66 mM Na2HPO4 66 mM Na2HPO4 66 mM Na2HPO4 66 mM Na2HPO4 0.2 M CH3COONa
3) Przed rozpoczęciem pomiarów przygotowaliśmy spektrofotometr przez ustawienie zakresu długości badanych fal od 300 do 800 nm oraz używając kuwety napełnionej wodą destylowaną (rozpuszczalnik) do 2/3 objętości ustawiliśmy wartość absorpcji wskazywaną przy pomiarze na wartość 0. 4) Dokonaliśmy pomiaru spektrofotometrem absorpcji w zakresie długości fal od 300 do 800 nm dla każdej wcześniej przygotowanej próbki. Doświadczenie to nazywa się absorpcyjną analizą spektralną. Absorpcyjna analiza spektralna – pomiar przepuszczalności lub absorpcji promieniowania roztworu badanego w funkcji długości fali świetlnej Przy każdym pomiarze wcześniej wyczyszczoną kuwetę wypełnialiśmy w 2/3 objętości roztworem badanej próbki, po czym umieszczaliśmy ją w spektrofotometrze i dokonywaliśmy pomiaru. Wyniki otrzymywaliśmy w postaci wydruku. Po każdym pomiarze kuwetę przemywaliśmy wodą destylowaną. Powyższe czynności powtórzyliśmy dla każdej próbki.
Długość fali [nm]
Absorpcja próbki 1
Absorpcja próbki 2
Absorpcja próbki 3
Absorpcja próbki 4
Absorpcja próbki 5
Absorpcja próbki 6
Absorpcja próbki 7
Absorpcja próbki 8
Długość fali [nm]
Absorpcja próbki 1
Absorpcja próbki 2
Absorpcja próbki 3
Absorpcja próbki 4
Absorpcja próbki 5
Absorpcja próbki 6
Absorpcja próbki 7
Absorpcja próbki 8
Tabela 2.2: Wartość absorpcji próbek przy długościach fali świetlnych od 300 do 800 nm
300 305 310 315 320 325 330 335 340 345 350 355 360 365 370 375 380 385 390 395 400 405 410 415 420 425 430 435 440 445 450 455 460 465 470 475 480 485 490 495 500 505 510 515 520 525 530 535 540 545 550
0,602 0,465 0,365 0,305 0,282 0,281 0,292 0,309 0,333 0,363 0,398 0,42 0,425 0,4 0,344 0,271 0,197 0,123 0,093 0,076 0,073 0,078 0,087 0,1 0,111 0,127 0,149 0,174 0,201 0,23 0,261 0,301 0,344 0,39 0,451 0,505 0,577 0,665 0,75 0,853 0,959 1,027 1,11 1,218 1,308 1,382 1,443 1,492 1,537 1,57 1,593
0,569 0,447 0,354 0,299 0,277 0,277 0,287 0,302 0,325 0,353 0,385 0,408 0,412 0,391 0,339 0,272 0,202 0,136 0,109 0,095 0,094 0,1 0,111 0,125 0,136 0,152 0,174 0,198 0,223 0,25 0,279 0,314 0,353 0,395 0,451 0,501 0,566 0,647 0,727 0,822 0,92 0,983 1,061 1,164 1,251 1,325 1,385 1,435 1,483 1,518 1,543
0,785 0,618 0,504 0,436 0,41 0,41 0,421 0,438 0,465 0,499 0,538 0,568 0,577 0,557 0,502 0,424 0,344 0,272 0,245 0,237 0,247 0,266 0,29 0,316 0,337 0,364 0,395 0,426 0,457 0,487 0,518 0,55 0,591 0,635 0,693 0,746 0,815 0,9 0,982 1,08 1,171 1,205 1,247 1,319 1,375 1,416 1,447 1,473 1,497 1,517 1,534
0,39 0,346 0,33 0,318 0,313 0,307 0,303 0,296 0,29 0,29 0,3 0,32 0,343 0,377 0,414 0,451 0,487 0,586 0,631 0,692 0,755 0,808 0,859 0,901 0,927 0,952 0,968 0,972 0,963 0,944 0,915 0,854 0,805 0,753 0,686 0,63 0,565 0,497 0,444 0,395 0,357 0,333 0,314 0,304 0,304 0,31 0,323 0,344 0,377 0,417 0,46
0,355 0,319 0,309 0,301 0,297 0,293 0,288 0,279 0,271 0,269 0,275 0,294 0,315 0,349 0,389 0,427 0,464 0,552 0,595 0,651 0,706 0,754 0,798 0,836 0,858 0,879 0,895 0,9 0,895 0,88 0,857 0,793 0,751 0,705 0,644 0,592 0,53 0,463 0,409 0,359 0,318 0,287 0,263 0,247 0,238 0,237 0,242 0,253 0,273 0,299 0,327
0,349 0,318 0,312 0,306 0,303 0,298 0,291 0,281 0,271 0,268 0,272 0,29 0,312 0,349 0,394 0,438 0,477 0,574 0,62 0,678 0,735 0,783 0,828 0,864 0,886 0,907 0,923 0,928 0,921 0,905 0,881 0,812 0,768 0,717 0,651 0,594 0,524 0,448 0,386 0,326 0,274 0,238 0,204 0,176 0,157 0,146 0,14 0,14 0,146 0,155 0,167
0,338 0,312 0,31 0,307 0,305 0,3 0,293 0,282 0,272 0,266 0,271 0,289 0,311 0,352 0,401 0,45 0,494 0,599 0,647 0,708 0,767 0,817 0,863 0,9 0,923 0,944 0,959 0,963 0,957 0,94 0,913 0,843 0,795 0,741 0,669 0,606 0,529 0,446 0,377 0,309 0,249 0,207 0,166 0,13 0,104 0,085 0,072 0,065 0,061 0,06 0,061
0,336 0,311 0,31 0,309 0,306 0,3 0,294 0,283 0,272 0,266 0,271 0,288 0,31 0,352 0,403 0,453 0,498 0,604 0,652 0,714 0,774 0,823 0,868 0,905 0,929 0,95 0,964 0,969 0,964 0,946 0,919 0,848 0,8 0,745 0,672 0,609 0,531 0,446 0,375 0,305 0,243 0,199 0,156 0,117 0,088 0,067 0,052 0,042 0,034 0,03 0,027
555 560 565 570 575 580 585 590 595 600 605 610 615 620 625 630 635 640 645 650 655 660 665 670 675 680 685 690 695 700 705 710 715 720 725 730 735 740 745 750 755 760 765 770 775 780 785 790 795 800
1,613 1,625 1,632 1,595 1,402 0,991 0,634 0,42 0,25 0,142 0,082 0,051 0,035 0,023 0,017 0,013 0,011 0,01 0,009 0,008 0,008 0,008 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,007 0,008 0,007 0,008 0,008 0,008 0,008 0,009 0,008 0,009 0,009 0,009 0,01 0,01 0,011 0,011 0,012 0,013
1,566 1,579 1,587 1,547 1,352 0,955 0,615 0,41 0,249 0,147 0,09 0,06 0,045 0,035 0,029 0,026 0,024 0,023 0,023 0,023 0,023 0,023 0,024 0,024 0,024 0,025 0,025 0,026 0,026 0,027 0,028 0,028 0,029 0,029 0,031 0,031 0,033 0,034 0,035 0,036 0,038 0,039 0,04 0,042 0,043 0,045 0,047 0,05 0,053 0,057
1,552 1,566 1,582 1,589 1,531 1,227 0,829 0,561 0,341 0,2 0,121 0,081 0,06 0,046 0,038 0,034 0,032 0,03 0,03 0,03 0,03 0,03 0,031 0,031 0,032 0,032 0,033 0,034 0,035 0,036 0,037 0,038 0,039 0,039 0,041 0,043 0,045 0,046 0,048 0,05 0,052 0,055 0,055 0,057 0,06 0,064 0,067 0,071 0,076 0,081
0,497 0,499 0,451 0,349 0,245 0,15 0,089 0,054 0,029 0,013 0,003 -0,001 -0,004 -0,005 -0,006 -0,007 -0,007 -0,008 -0,008 -0,008 -0,009 -0,009 -0,009 -0,009 -0,01 -0,01 -0,01 -0,011 -0,011 -0,012 -0,012 -0,013 -0,013 -0,014 -0,014 -0,015 -0,015 -0,016 -0,017 -0,018 -0,019 -0,02 -0,019 -0,021 -0,022 -0,023 -0,024 -0,026 -0,027 -0,03
0,353 0,354 0,323 0,256 0,188 0,126 0,086 0,064 0,047 0,038 0,033 0,031 0,03 0,03 0,03 0,031 0,031 0,032 0,033 0,034 0,035 0,036 0,037 0,038 0,039 0,04 0,041 0,042 0,043 0,045 0,046 0,048 0,049 0,05 0,053 0,055 0,058 0,06 0,063 0,065 0,068 0,072 0,072 0,076 0,08 0,085 0,085 0,095 0,101 0,108
0,178 0,178 0,163 0,132 0,1 0,071 0,052 0,042 0,035 0,031 0,03 0,029 0,029 0,029 0,03 0,031 0,031 0,032 0,033 0,034 0,035 0,036 0,037 0,038 0,039 0,04 0,041 0,042 0,043 0,045 0,046 0,047 0,049 0,049 0,052 0,055 0,057 0,059 0,062 0,064 0,067 0,071 0,071 0,075 0,079 0,083 0,088 0,093 0,099 0,106
0,063 0,062 0,058 0,049 0,04 0,032 0,027 0,024 0,022 0,022 0,022 0,023 0,023 0,024 0,024 0,025 0,026 0,027 0,027 0,028 0,029 0,03 0,031 0,031 0,032 0,033 0,034 0,035 0,036 0,037 0,038 0,04 0,041 0,041 0,044 0,045 0,047 0,049 0,051 0,053 0,056 0,059 0,059 0,063 0,066 0,069 0,073 0,077 0,082 0,087
0,026 0,025 0,024 0,023 0,022 0,022 0,021 0,021 0,021 0,022 0,023 0,024 0,025 0,025 0,026 0,027 0,028 0,028 0,029 0,03 0,031 0,032 0,032 0,033 0,034 0,035 0,036 0,037 0,038 0,039 0,04 0,041 0,043 0,043 0,046 0,047 0,05 0,052 0,054 0,056 0,059 0,062 0,063 0,066 0,069 0,073 0,077 0,082 0,087 0,093
D. Wyniki doświadczenia: 1) Dane otrzymane z wyżej wymienionych wydruków nanieśliśmy na wspólny wykres zależności absorpcji od długości fali świetlnej. Poszczególne wykresy wykazują korelację pomiędzy pH badanego roztworu, a jego zdolnościami absorpcyjnymi.
Wykres 2.1:
2) Z wykresu 3.1 mogliśmy odczytać długości fali w punktach izobestycznych. Punkt izobestyczny (izobastyczny) – charakterystyczna długość fali, dla której różne formy spektralne związku chemicznego, występujące przy różnym pH, wykazują taką samą absorpcję Nasze punkty izobestyczne wystąpiły przy falach świetlnych o długości: - 316 nm
- 367 nm - 481 nm - 618 nm 3) Na wykresie 3.1 również wyraźnie zaobserwowaliśmy, że w przypadku próbki trzeciej najprawdopodobniej popełniliśmy błąd. Wykres ten nieznacznie odbiega od spodziewanych wartości absorpcji tej próbki dla konkretnych długości fali świetlnych. Bardzo możliwe, że błąd ten wynika z niedokładności w przygotowaniu próbki, bądź też niedokładne wypłukanie przez nas kuwety. Ze względu na poprawność pozostałych wyników możemy przyjąć, iż raczej błąd ten nie jest efektem źle skalibrowanych pipet automatycznych, niedokładności pomiaru przez spektrofotometr lub nieprecyzyjnych stężeń odczynników. Otrzymany pomiar w niewielkim tylko stopniu wpłynie na wykres i wyliczone pK w poniższym podpunkcie. Prawidłowy wykres 3.1 Próbki 3 biorąc pod uwagę krzywe roztworów o innym pH, powinien wykazywać się absorpcją niższą o ok. 0.2 wartości. 4) Z wykresu 3.1 zauważyliśmy, że maksymalną absorpcję (1.632) osiągnęła próbka 1 dla długości fali świetlnej 565 nm. Narysowaliśmy więc wykres zależności absorpcji przy tej długości fali od pH w naszych próbkach. Tabela 2.3: Wartość absorpcji próbek dla fali świetlnej o długości 565 nm Numer próbki 1 2 3 4 5 6 7 8
pH 9,97 9,01 7,94 6,98 6,81 6,47 5,91 5
Wartość absorpcji 1,632 1,587 1,582 0,451 0,323 0,163 0,058 0,024
Wykres 2.2:
5) Na powyższym wykresie wyznaczyliśmy pK czerwieni fenolowej, z własności mówiącej, że pK jest równe pH, gdy połowa związku występuje w formie kwasowej, a połowa w zasadowej. Własność ta wynika z równania Hendersona - Hasselbalcha. Z niego też widać, że gdy logarytm z ilorazu stężeń akceptora i donora wynosi zero, wtedy pH = pK.
pH = pKa + log(Cakceptora/Cdonora) Wyznaczając pH metodą graficzną, korzystając z wykresu 3.2 odczytaliśmy, że połowa związku występuje w formie kwasowej, a połowa w zasadowej dla pH=7.4 z czego wynika, że dla czerwieni fenolowej pK=7.4. Ewentualne niedokładności w otrzymanych wartościach mogą wynikać ze wspomnianego w punkcie trzecim błędu. Przy prawidłowej absorpcji Próbki 3 dla długości fali 565 nm wartość pH otrzymanego z wykresu 3.2, a w konsekwencji pK czerwieni fenolowej, powinny być o ok. pół jednostki większe.
Zadanie nr. 3 - Ćwiczenie nr. 10.4.3 – Spektrofotometryczna analiza jakościowa
A. Cel doświadczenia: Doświadczenie to ma na celu zapoznanie się z przykładem spektroskopowej analizy jakościowej związków chemicznych oraz prawem addytywności absorpcji.
B. Materiały użyte w doświadczeniu: Doświadczenie wymagało pobrania szkła laboratoryjnego, chemicznych, w liczbie 4 oraz wody destylowanej.
odczynników
C. Przebieg doświadczenia: Po uprzednim przygotowaniu wszystkich potrzebnych materiałów, sporządziłyśmy 4 roztwory. Poszczególne probówki zawierały po 10 ml wody destylowanej i kolejno:
60 µl czerni naftalenowej 12 µl rodaminy 50 µl tioniny 3 ml octanu miedzi (II)
Przed przystąpieniem do pomiarów niezbędne było wyzerowanie aparatu. W tym celu do kuwety spektrofotometrycznej nalałyśmy wody do ¾ objętości. Po wyzerowaniu ustawiłyśmy spektrofotometr aby mierzył absorpcję przy falach długości od 800 do 300 nm (w odstępach co 5 nm). Następnie napełnialiśmy kuwetę do ¾ objętości związkami pochodzącymi z kolejnych probówek i dokonywałyśmy pomiaru ich absorpcję. Wyniki tych pomiarów zostały przedstawione w postaci tabeli (Tabela 3.1) oraz wykresu (Wykres 3.1).
Tabela 3.1: Wartość absorpcji próbek przy długościach fali świetlnych od 300 do 800 nm
Długość fali 300
Wartość absorpcji próbek Czerń Rodamina Tionina naftalenowa 0,319 0,041 0,103
Wartość absorpcji próbek Octan miedzi 0,734
Długość fali 555
Czerń naftalenowa -0,025
Rodamina
Tionina
0,111
0,212
Octan miedzi (II) 1,164
305
0,195
0,035
0,077
0,737
560
-0,025
0,091
0,227
1,228
310
0,121
0,032
0,064
0,792
565
-0,023
0,063
0,242
1,302
315
0,077
0,025
0,049
0,819
570
-0,022
0,036
0,256
1,37
320
0,046
0,019
0,033
0,829
575
-0,02
0,017
0,274
1,421
325
0,026
0,015
0,024
0,816
580
-0,019
0,007
0,301
1,462
330
0,016
0,016
0,021
0,777
585
-0,017
0,001
0,33
1,49
335
0,009
0,018
0,018
0,715
590
-0,015
-0,001
0,354
1,508
340
0,003
0,017
0,016
0,637
595
-0,013
-0,002
0,375
1,526
345
-0,001
0,019
0,015
0,566
600
-0,01
-0,003
0,38
1,544
350
-0,009
0,014
0,006
0,508
605
-0,006
-0,003
0,352
1,552
355
-0,01
0,014
0,006
0,478
610
-0,003
-0,004
0,286
1,567
360
-0,011
0,01
0,006
0,457
615
0,001
-0,003
0,21
1,577
365
-0,013
0,006
0,005
0,43
620
0,006
-0,003
0,124
1,586
370
-0,014
0,004
0,004
0,413
625
0,01
-0,003
0,07
1,585
375
-0,01
0,012
0,007
0,414
630
0,015
-0,004
0,041
1,573
380
-0,014
0,003
0,002
0,413
635
0,02
-0,003
0,024
1,534
385
-0,015
0,003
0
0,44
640
0,025
-0,004
0,015
1,454
390
-0,015
0,003
0,001
0,449
645
0,03
-0,003
0,01
1,322
395
-0,015
0,006
0,001
0,46
650
0,037
-0,004
0,008
1,103
400
-0,016
0,005
0,002
0,463
655
0,043
-0,004
0,006
0,883
405
-0,017
0,004
0,002
0,451
660
0,049
-0,003
0,005
0,674
410
-0,017
0,004
0,003
0,43
665
0,056
-0,004
0,005
0,495
415
-0,017
0,004
0,003
0,417
670
0,06
-0,004
0,004
0,385
420
-0,018
0,002
0,004
0,416
675
0,066
-0,003
0,004
0,284
425
-0,018
0,003
0,005
0,419
680
0,072
-0,003
0,003
0,198
430
-0,019
0,003
0,006
0,427
685
0,078
-0,004
0,003
0,139
435
-0,02
0,003
0,007
0,438
690
0,083
-0,003
0,003
0,098
440
-0,02
0,003
0,009
0,45
695
0,087
-0,003
0,003
0,072
445
-0,021
0,004
0,01
0,458
700
0,093
-0,004
0,003
0,051
450
-0,021
0,004
0,012
0,46
705
0,097
-0,003
0,003
0,036
455
-0,02
0,008
0,015
0,448
710
0,1
-0,003
0,003
0,027
460
-0,021
0,01
0,017
0,44
715
0,103
-0,003
0,003
0,02
465
-0,021
0,014
0,02
0,433
720
0,106
-0,002
0,004
0,015
470
-0,022
0,019
0,023
0,429
725
0,108
-0,003
0,004
0,012
475
-0,022
0,023
0,026
0,428
730
0,109
-0,002
0,005
0,009
480
-0,023
0,03
0,029
0,434
735
0,11
-0,002
0,006
0,008
485
-0,023
0,038
0,032
0,447
740
0,111
-0,002
0,006
0,007
490
-0,023
0,047
0,036
0,464
745
0,109
-0,003
0,006
0,006
495
-0,025
0,058
0,039
0,485
750
0,108
-0,003
0,007
0,006
500
-0,022
0,069
0,048
0,511
755
0,105
-0,003
0,008
0,006
505
-0,021
0,077
0,055
0,529
760
0,101
-0,002
0,008
0,006
510
-0,025
0,083
0,058
0,553
765
0,104
0,004
0,01
0,007
515
-0,026
0,088
0,068
0,604
770
0,099
0
0,01
0,007
520
-0,026
0,1
0,079
0,665
775
0,094
-0,001
0,011
0,007
525
-0,027
0,109
0,091
0,733
780
0,088
0,002
0,011
0,007
530
-0,027
0,122
0,105
0,803
785
0,083
0,003
0,013
0,008
535
-0,027
0,133
0,12
0,869
790
0,075
0,001
0,013
0,008
540
-0,026
0,139
0,141
0,943
795
0,067
0,004
0,016
0,011
545
-0,026
0,14
0,164
1,014
800
0,054
0,001
0,014
0,009
550
-0,026
0,131
0,187
1,082
Wykres 3.1: Zależność wartości absorpcji próbek od długości fali świetlnej 1,6
1,4
Absorbcja światła
1,2
1
Octan miedzi
0,8
Rodamina Tionina
0,6
Czerń naftalenowa
0,4
0,2
0 300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
800
-0,2
Długość fali [nm]
Wykres czerni naftalenowej: Występują tu dwa maksima adsorpcji, osiągane przy długości fali 620 nm (wartość adsorpcji wynosi 1,586) oraz 320 nm (wartość adsorpcji wynosi 0,829).
Wykres rodaminy: Maksimum adsorpcji osiągane jest tutaj przy długości fali 545 nm (wartość adsorpcji wynosi 0,140).
Wykres tioniny: Maksimum adsorpcji osiągane jest tutaj przy długości fali 600 nm (wartość adsorpcji wynosi 0,380).
Wykres octanu miedzi: Maksimum adsorpcji, osiągane przy długości fali 740 nm (wartość adsorpcji wynosi 0,111). Drugiego maksimum nie można wyznaczyć, ponieważ znajduje się ono poza skalą. Jest to spowodowane zbyt dużym stężeniem roztworu, które wpływa na niski poziom pochłaniania światła.
Spektrofotometryczna analiza jakościowa próbki X: Po otrzymaniu wszystkich pomiarów przeprowadziłyśmy pomiar nieoznaczonej próbki X. Wyniki tych pomiarów zostały przedstawione w postaci tabeli (Tabela 3.2) oraz wykresu (Wykres 3.2), a następnie porównane i zestawione z dwoma krzywymi (Wykres 3.1), które obrazują co znajdowało się w nieoznaczonej próbce X (Wykres 3.3).
Tabela 3.2: Zależność absorpcji Próbki X od długości fali świetlnej Długość fali [nm]
Absorpcja próbki X
Długość fali [nm]
Absorpcja próbki X
Długość fali [nm]
Absorpcja próbki X
Długość fali [nm]
Absorpcja próbki X
300
1,198
430
0,115
555
0,205
680
0,561
305
0,922
435
0,118
560
0,197
685
0,587
310
0,762
440
0,123
565
0,191
690
0,612
315
0,621
445
0,129
570
0,187
695
0,632
320
0,511
450
0,137
575
0,185
700
0,656
325
0,436
455
0,147
580
0,185
705
0,676
330
0,399
460
0,159
585
0,186
710
0,693
335
0,375
465
0,172
590
0,189
715
0,709
340
0,362
470
0,188
595
0,195
720
0,725
345
0,361
475
0,202
600
0,204
725
0,739
350
0,359
480
0,218
605
0,217
730
0,752
355
0,362
485
0,235
610
0,23
735
0,761
360
0,361
490
0,249
615
0,244
740
0,77
365
0,353
495
0,261
620
0,263
745
0,776
370
0,338
500
0,277
625
0,283
750
0,779
375
0,32
505
0,287
630
0,303
755
0,782
380
0,286
510
0,294
635
0,326
760
0,782
385
0,249
515
0,307
640
0,349
765
0,793
390
0,222
520
0,314
645
0,373
770
0,79
395
0,19
525
0,311
650
0,403
775
0,787
400
0,162
530
0,299
655
0,43
780
0,782
405
0,143
535
0,281
660
0,458
785
0,776
410
0,129
540
0,257
665
0,487
790
0,769
415
0,12
545
0,236
670
0,508
795
0,762
420
0,116
550
0,219
675
0,533
800
0,736
425
0,114
Wykres 3.2: Zależność wartości absorpcji Próbki X od długości fali świetlnej 1,4
Adsorpcja światła
1,2 1 0,8
Próka X 0,6 0,4 0,2 0 300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
800
Długość fali (nm)
Wykres 3.3: Zależność wartości absorpcji Próbki X oraz jej składowych od długości fali świetlnej
1,4 1,2
Adsorbcja światła
1 0,8 Octan miedzi (II) 0,6
Rodamina Próbka X
0,4 0,2 0 300
350
400
450
500
550
600
-0,2
Długość fali (nm)
650
700
750
800
E. Wnioski: Porównując te wykresy możemy jasno określić co zawierała w/w niezidentyfikowana próbka X. Widmo absorpcji dla tej substancji przyjmuje wartości szczytowe dla długości fali 355 nm (wartość absorpcji wynosi 0,362), 520 nm (wartość absorpcji wynosi 0,314) oraz 765 nm (wartość absorpcji wynosi 0,793). Porównując wartości absorpcji w określonych długościach fali z Wykresem 3.1, możemy wyciągnąć wniosek, że próbka X zawierała znaczne ilości octanu miedzi (II) oraz niewielką ilość rodaminy.
Zadanie nr. 4 – Zadanie dodatkowe Roztwór białka o masie 18kDa i A=0,5 rozcieńczono 4x. Współczynnik ekstynkcji wynosi =18000dm3/mol*cm. Oblicz stężenie molowe tego białka mol/ dm3 oraz mg/ml. Rozwiązanie: A= C* ε* l C=
A *l
Przyjmujemy długość kuwety 1cm, czyli l = 1 cm więc stężenie po rozcieńczeniu:
C1 =
0,5 1 mol 18000 *1 36000 dm 3
Stężenie przed rozcieńczeniem: C2 = C1*4 C2 =
1 1 mol *4 = 36000 9000 dm 3
1 Da = 1 g/mol
18kDa = 18000 g/mol
18000 g
-
X
-
g
ms = X =
1
M = 18000g/mol
mol
1 mola 9000
1 *18000 = 2g 9000
2 g/dm3 = 2
mg ml
Odp: Stężenie molowe tego związku wynosi odpowiednio oraz 2
V = 1 dm3
mg ml
1 mol 9000 dm 3